2025/4/8 9:55:00

一、产品概述

淀粉总量检测试剂盒用于测定植物组织中的淀粉含量,其原理为:利用80%乙醇将样品中的可溶性糖与淀粉分离,然后通过酸水解法将淀粉分解为葡萄糖,最后采用蒽酮比色法测定葡萄糖含量,从而计算淀粉含量。该方法具有操作简便、灵敏度高、重现性好等优点,适用于食品、农业、科研等领域。

 

二、产品组成

试剂盒通常包含以下组分(具体规格和保存条件因品牌而异):

试剂一:提取液,用于提取样本中的淀粉。

试剂二:水解液,用于将淀粉水解为葡萄糖。

试剂三:工作液,用于与葡萄糖反应生成有色物质。

标准品:已知浓度的葡萄糖标准液,用于绘制标准曲线。

其他配件:如比色皿、离心管等实验耗材。

 

三、操作步骤

1. 样本制备

称量样本:称取适量新鲜样本(如植物组织),建议称取约0.03g-0.1g,具体量可根据样本淀粉含量调整。

匀浆提取:将样本放入研钵中研碎,加入1mL试剂一,充分匀浆后转移到2mL离心管中。

水浴离心:将离心管置于80℃水浴中加热30分钟,期间可轻轻晃动几次。然后,在室温下以3000g离心力离心5分钟,弃上清,留沉淀。

2. 淀粉水解

糊化处理:向沉淀中加入0.5mL蒸馏水,放入沸水浴中糊化15分钟,盖紧管口以防止水分散失。

水解提取:冷却后,加入0.35mL试剂二,放入沸水浴中提取15分钟,期间振荡3-5次。然后,加入0.85mL蒸馏水,混匀后在室温下以3000g离心力离心10分钟,取上清液待测。

3. 测定操作

预热仪器:将分光光度计预热30分钟以上,调节波长至620nm,用蒸馏水调零。

配制工作液:临用前,在试剂三中加入一定量的蒸馏水后,缓慢加入浓硫酸,不断搅拌至充分溶解,待用。

加样测定:取0.2mL样本和1mL工作液至EP管中,混匀后放入95℃水浴中加热10分钟,盖紧管口以防止水分散失。自然冷却至室温后,在620nm波长下测定吸光度值。

4. 标准曲线绘制

配制标准溶液:用标准品配制不同浓度的标准溶液,如0.2mg/mL、0.1mg/mL、0.05mg/mL等。

测定标准吸光度:取0.2mL标准溶液和1mL工作液至EP管中,按照上述测定方法测定吸光度值。

绘制标准曲线:以标准溶液浓度为横坐标,吸光度值为纵坐标,绘制标准曲线,得到线性回归方程。

5. 淀粉含量计算

计算ΔA:测定样本吸光度值后,减去空白管的吸光度值,得到ΔA。

代入方程:将ΔA代入标准曲线的线性回归方程,计算出样本中的葡萄糖含量。

换算淀粉含量:根据葡萄糖含量与淀粉含量的换算系数(通常为0.9或1.11),计算出样本中的淀粉含量。

 

四、注意事项

1.样本处理:推荐使用新鲜样本,若不能立即实验,样本可在-80℃保存。测定时,应控制解冻的温度和时间,室温环境下解冻时,需在4小时内完成样品解冻。

2.试剂配制:工作液具有强腐蚀性,配制时需谨慎操作,现配现用。用不完的试剂需按照说明保存。

3.吸光度测定:若吸光值超出线性范围(如大于1或小于0.1),需对样本进行稀释或浓缩后再测定。

4.实验安全:实验过程中需穿戴适当的防护用品,如手套、护目镜等,以避免试剂对皮肤和眼睛的刺激。

 

五、常见问题及解决方案

问题

可能原因

解决方案

吸光值过高或过低

样本量不合适

调整样本量或稀释倍数,重新测定

结果不准确

试剂过期或操作不当

检查试剂有效期,严格按照说明书操作

沉淀不完全

离心时间或离心力不足

延长离心时间或增加离心力

工作液出现沉淀

配制时未充分搅拌或保存不当

配制时充分搅拌,按照说明保存试剂

 

上一篇:蛋白纯化系统如何去做亲和实验 下一篇:细胞转染中常用的病毒转染技术介绍