1. 磁珠法
步骤：
1.加入一定量（如200μl）的血液标本。
2.加入Proteinase K溶液和裂解液，振荡混匀。
3.将离心管置于一定温度（如65℃）孵育一段时间（如15分钟），期间颠倒混匀数次。
4.室温放置一段时间后，加入异丙醇振荡混匀。
5.加入磁珠悬浮液，振荡混匀并静置，使磁珠充分吸附DNA。
6.将离心管放置于磁力架上静置，磁珠完全吸附后，小心吸去液体。
7.加入洗涤液洗涤磁珠，去除杂质。
8.加入洗脱液，将DNA从磁珠上洗脱下来。
特点：磁珠法可以进行自动化的提取，省去了大量的人工操作，省时又省力，适合处理样本量较大的情况。
2. 离心柱法
步骤（以某品牌试剂盒为例）：
1.取一定量（如200μl）的新鲜、冷冻或加入各种抗凝剂的血液，放入离心管。
2.加入缓冲液，充分混匀，室温放置一段时间。
3.加入结合液，立刻涡旋振荡充分混匀。
4.加入异丙醇，涡旋振荡充分混匀。
5.将混合物加入吸附柱中，离心，倒掉收集管中的废液。
6.加入抑制物去除液，离心，弃废液。
7.加入漂洗液，离心，弃废液，重复洗涤一次。
8.将吸附柱放回空收集管中，离心，尽量除去漂洗液。
9.取出吸附柱，放入干净的离心管中，在吸附膜的中间部位加入洗脱缓冲液，室温放置一段时间后离心，将得到的溶液重新加入离心吸附柱中，室温放置后再次离心，收集DNA溶液。
特点：离心柱法的提取纯度高一些，但样本处理方法比较繁琐，全程需人工操作，耗时长。
3. 酚-氯仿法
步骤：
1.加入红细胞裂解液去除红细胞。
2.加入细胞裂解液、蛋白酶K，混匀，置于一定温度（如50℃）水浴一段时间（如3小时）。
3.将消化好的液体移入离心管中，加入等体积饱和酚，混匀，离心。
4.吸取上清转入另一离心管中，加入等体积的酚氯仿，混匀，离心。
5.将上清液转入另一离心管中，加入醋酸钠和异丙醇（或乙醇），混匀，置于低温冰箱中一段时间（如3小时）。
6.离心，弃去上清。
7.加入乙醇，温和摇晃，离心，弃去上清，重复洗涤一次。
8.将洗涤好的DNA置于超净工作台干燥。
9.加入TE或去离子水溶解沉淀DNA，置于低温保存。
特点：酚-氯仿法抽提DNA的原理是通过有机溶剂抽提，去除蛋白、多糖、酚类等杂质，再加入乙醇沉淀即可使核酸分离出来。其优点是不限制初始样本量，缺点是其试剂对人体有毒害作用，且操作繁琐，耗时很长，因此基本被现在的试剂盒方法取代。
4. 试剂盒法
步骤：
1.在离心管底部加入蛋白酶K和一定量（如200μl）的全血样本。
2.加入Buffer AL，旋涡震荡混匀。
3.一定温度（如56℃）水浴一段时间（如10分钟）。
4.短暂离心收集离心管盖上的液体。
5.添加无水乙醇，旋涡震荡混匀，短暂离心收集离心管盖上的液体。
6.过吸附柱，离心，弃滤液。
7.加入Buffer AW1，离心，弃滤液。
8.加入Buffer AW2，离心，弃滤液。
9.最高速离心。
10.加入洗脱液，室温静置，离心，将DNA洗脱下来。
特点：试剂盒法操作相对简便，提取效率较高，但价格可能较高。不同品牌的试剂盒在操作步骤、提取效率和价格等方面可能存在差异。
